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大鼠常見免疫細胞的流式鑒定

作者:admin 信息來源:達科為 日期:20250219 打印 字體:  
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大鼠模型是生物醫(yī)學(xué)研究中重要的資源,與人類免疫系統(tǒng)相似,而常被用于免疫相關(guān)功能研究。然而目前小鼠模型在基礎(chǔ)和機制免疫學(xué)研究中占主導(dǎo)地位,相對缺乏對大鼠模型中免疫細胞的流式分析鑒定。本文將分享對大鼠常見免疫細胞流式鑒定方案,鑒定分析不同組織中的粒細胞、巨噬細胞、T細胞、B細胞及NK細胞。

實驗方案1

 

該方案以10-12周齡Lewis大鼠的肌肉、脾臟、胸腺和腸系膜淋巴結(jié)為樣本,組織經(jīng)消化并用40μm細胞過濾器過濾后制備成單細胞懸液。

配色Pannel


 

圈門邏輯:

 

 

圈門分析

1. 側(cè)向散射(SSC)和前向散射(FSC)參數(shù)對樣本細胞進行圈門,利用FSC-H去除粘連細胞,然后進行單一細胞圈門;采用死活染料及CD45對活性良好的CD45+細胞進行下游分析;

2. 巨噬細胞:根據(jù)CD11B、CD68圈出巨噬細胞(CD11B+CD68+),再根據(jù)CD86CD163分別圈出M1CD86+M2CD163+型巨噬細胞;

3. 單核細胞:根據(jù)CD11B、CD43圈出單核細胞(CD11B+CD43+);

4. 粒細胞:根據(jù)CD11BCD43、CD62L圈出粒細胞(CD11B+CD43+CD62L+/-SSChi),當粒細胞被激活CD62L則低表達;

5. 淋巴細胞:利用TCR?δ圈出?δT細胞,接著在TCR?δ-的細胞中,進一步根據(jù)CD3劃分 T 細胞(CD3+)和非TCD3-)淋巴細胞;

(1)T細胞:在CD3+T細胞中,根據(jù)CD4、CD8圈出CD4+CD8+ T細胞;CD4+T細胞中圈出Treg細胞CD25+、Th1細胞CCR1+CCR5+和的Th2細胞CCR4+CCR8+;

CD3+T細胞中,在根據(jù)CD44CD62L圈出激活性T細胞(CD44+CD62L-)、記憶T細胞(CD44hiCD62Llo)、naive T細胞(CD44loCD62Lhi);

(2)B細胞:非T細胞淋巴細胞中,根據(jù)CD45R圈出B細胞(CD3-CD45R+);

(3)NK細胞:非T細胞淋巴細胞中,根據(jù)CD49b圈出NK細胞(CD3-CD49b-)。

 

 

實驗方案2

 

該方案以Sprague-Dawley大鼠的血液和肺、脾臟、肝臟、骨髓細胞為樣本。

配色Pannel:



 

 

流式結(jié)果:


 

 

圈門分析:

1. 側(cè)向散射(SSC)和前向散射(FSC)參數(shù)對樣本細胞進行圈門,去除碎片(i),利用死活染料去除死細胞(ii),利用FSC-HFSC-W參數(shù)來排除粘連細胞(iii),利用CD45圈出淋巴細胞(iv);

2. T細胞:從CD45+細胞中,圈出CD3+T細胞(v),根據(jù)CD4、CD8圈出CD4+TCD8+ T細胞(vi;

3. NK細胞;從CD45+CD3-的細胞中,圈出CD161+His48-細胞(vii);

4. B細胞:從CD45+CD3-CD161-His48+/-的細胞,圈出CD45R+CD161-細胞(viii);

5. 中性粒細胞:從CD45+CD3-CD161-CD45R-的細胞中,圈出CD43+細胞(ix);

6. 單核細胞:從CD45+CD3-CD161-CD45R-CD43-/lo的細胞中,利用CD43His48的差異表達圈出單核細胞亞群 ——CD43LoHis48Hi  CD43HiHis48Lo-Intx)。

總結(jié)

兩個方案為大鼠常見免疫細胞的鑒定分析提供了框架,但對一些細胞群的鑒定有所差異:方案1通過CD45+CD3-CD49B+鑒定NK細胞,方案2則通過CD45+CD3-CD163-鑒定NK細胞;方案1通過CD45+CD11B+CD43+鑒定單核細胞,而方案2通過CD43His48將單核細胞分為兩群(CD45+CD3-CD161-CD45R-CD43-/loCD43LoHis48Hi 、 CD45+CD3-CD161-CD45R-CD43-/loCD43HiHis48Lo-Int),強調(diào)了CD43His48指標對中性粒和單核細胞鑒定中的實用性。

 

參考文獻:

[1]Adusei KM, Ngo TB, Alfonso AL, Lokwani R, DeStefano S, Karkanitsa M, Spathies J, Goldman SM, Dearth CL, Sadtler KN. Development of a High-Color Flow Cytometry Panel for Immunologic Analysis of Tissue Injury and Reconstruction in a Rat Model. Cells Tissues Organs. 2023;212(1):84-95.

[2]Barnett-Vanes A, Sharrock A, Birrell MA, Rankin S. A Single 9-Colour Flow Cytometric Method to Characterise Major Leukocyte Populations in the Rat: Validation in a Model of LPS-Induced Pulmonary Inflammation. PLoS One. 2016 Jan 14;11(1):e0142520. 

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